纤维素酶高产菌株F1—1的选育与产酶条件的优化

材料与方法

1.1 材料

菌样：取自麻园土、沤麻水、腐烂麻壳、沤麻塘泥、腐烂苎麻基质、农家肥、腐烂木材等。

主要试剂：木糖、醋酸纤维素钠（上海楷洋生物技术有限公司）；木聚糖（Sigma公司）；纤维素二糖[（生工生物工程（上海）股份有限公司]；3，5-二硝基水杨酸（国药集团化学试剂有限公司）。

主要仪器：立式压力蒸气灭菌器（GR110DR型，ZEALWAY）；分光光度计（UV-2700，日本岛津）；离心机（TGL-16C，Anke）；电热恒温水浴锅（HH·SY21-Ni型，北京长源实验设备厂）；电子分析天平（UX6200H型，日本岛津）；气浴恒温振荡器（THZ-82B，江苏金坛市医疗仪器厂）；生化培养箱（SPX-250B型，天津泰斯特仪器有限公司）；超纯水器（RO-200型，台湾艾柯）。

1.2 方法

1.2.1 产纤维素酶菌株的筛选与鉴定

1）初筛。每种样品各取25 g放入三角瓶中，加入225 mL无菌水，130 r/min振荡10 min，用3层纱布过滤除去可见杂质。取滤液30 mL接种到LB培养基中进行富集培养，28 ℃、180 r/min培养过夜。取1 mL菌液稀释到10-4、10-5、10-6，涂布于筛选培养基（1% NaCl，0.5% 蛋白胨， 0.5%醋酸纤维素钠， 1%琼脂），28 ℃恒温培养过夜，挑取平板上水解斑较大的菌落。

2）菌种纯化。将筛选出的菌落进行划线分离，纯化出单菌落。测量菌落大小和水解斑直径，挑取菌落大、产酶旺盛的菌株保存备用。

3）菌种鉴定。设计引物对菌株的16S rDNA序列进行克隆，测序后在NCBI数据库中进行比对分析。引物序列为F：5′-CTTGCTCCCTGATGTTAGACGGCGG-3′；R：5′-ACTTCGGGTGTTACAAACTC

TCGT-3′。

1.2.2 固体培养基成分优化 通过设计正交L9（34）试验初步优化碳源和氮源的组合与添加量，利用培养基上水解斑的大小判断酶活性的大小。固定醋酸纤维素添加量为1.0%，胰蛋白胨和酵母提取物添加量总和为1.0%，无机盐添加量为0.2% MgSO4、0.05% CaCl2、0.05% NaH2PO4和0.05% Na2HPO4。通过调整纤维素二糖（0.4%、0.8%、1.2%）、木糖（0、0.3%、0.5%）、葡萄糖（0.2%、0.6%、1.2%）和胰蛋白胨（0、0.6%、1.0%）添加量进行优化，32 ℃培养3 d。

1.2.3 半固体培养基成分优化 根据固体培养基优化试验结果，固定纤维素二糖、木糖和无机盐等成分添加量，通过设计正交L9（34）试验对葡萄糖（0、0.1%、0.2%）、麦麸（0.2%、0.6%、1.2%）、玉米粉（0.2%、0.6%、1.2%）和硝酸钾（0.2%、0.4%、0.8%）添加量进行优化，32 ℃、150 r/min培养3 d。发酵液经离心收集酶的初提液，用DNS法[11]测定纤维素酶活性。

1.2.4 培养条件单因子优化 根据半固体培养基成分优化结果，进一步考察发酵时间、转速和培养温度对酶活性的影响。①发酵时间。固定培养基，在32 ℃、150 r/min的条件下，分别在发酵1、2、3 、4 d时取样，分离初提酶液，测定纤维素酶活性。②转速。由于培养到第三天时酶活性基本达到较高水平，因此在固定培养基和32 ℃、发酵3 d的条件下考察摇床转速（100、170、220 r/min）对酶活性的影响。③培养温度。固定培养基，在170 r/min发酵3 d 的条件下，对培养温度（28、32、35、37 ℃）进行优化。

1.2.5 酶活性测定 以含0.4%诱导底物（醋酸纤维素钠）、0.5%酵母提取物、0.5%胰蛋白胨和 0.5% NaCl为培养基，接种后在30 ℃、170 r/min条件下培养72 h，测定发酵液的酶活性。取1 mL发酵液以6 000 r/min离心5 min，吸取上清液0.5 mL与预热到50 ℃的2 mL 1%羧甲基纤维素钠盐混合，在50 ℃保温30 min。之后取0.5 mL反应液与0.5 mL DNS试剂混合，放入沸水中5 min，然后加入4 mL去离子水混匀，在540 nm处测定其吸光度。1个酶活性单位（U）为l mL酶液反应1 min生成1 μmol还原糖所需的酶量。

2 结果与分析

2.1 产纤维素酶菌株的筛选与鉴定结果

通过对各基质菌株的筛选，最终从腐烂的苎麻基质中筛选到适宜菌株，在初选培养基上有约10种细菌长势良好，其中F1-1菌株的纤维素酶活力较高。对该菌株进行纤维素酶活性测定，其酶活性为103.20 U/mL。对克隆到的F1-1菌株的16S rDNA序列进行测序，结果（图1）显示，其序列长1 38 2 bp，在NCBI数据库中进行比对分析，发现该菌株与Bacillus属菌株有99%的相似性。

2.2 产酶条件的优化结果

2.2.1 固体培养基成分的优化结果 固体培养基优化结果如表1所示。由表1可知，所用固体培养基的优化结果为醋酸纤维素1.0%、纤维二糖0.8%、木糖0.5%、葡萄糖0.2%、胰蛋白胨0.6%、酵母提取物0.4%、MgSO4 0.2%、CaCl2 0.05%、NaH2PO4 0.05%和Na2HPO4 0.05%，此时水解斑半径最大为1.7 cm。优化后的水解斑加大，效果明显，如图2所示。

2.2.2 半固体培养基成分优化结果 半固体培养基正交试验优化结果见表2。由表2可知，优化试验各组合中纤维素酶活性最高可达613.44 U/mL。在试验范围内F1-1的纤维素酶活性随着葡萄糖、麦麸和玉米粉添加量的增加而提高，而硝酸钾添加量在0.4%时最适合。

2.2.3 培养条件单因子优化结果 不同培养时间对纤维素酶活性的影响见图3。由图3可知，培养1 d时纤维素酶活性最低，可能因菌体数量较少，随着培养时间的延长，纤维素酶活性逐步提高，培养3 d时F1-1菌株的纤维素酶活性接近600 U/mL，培养4 d时纤维素酶活性达到622.68 U/mL。

转速对F1-1菌株的纤维素酶活性的影响见图4。由图4可知，摇床转速为220 r/min时F1-1菌株的纤维素酶活性可达636.44 U/mL，转速为170 r/min时纤维素酶活性为621.25 U/mL，而转速为100 r/min时纤维素酶活性只有409.60 U/mL。

培养温度对纤维素酶活性的影响见图5。由图5可知，培养温度为35 ℃和37 ℃时纤维素酶活性分别达到了645.22 U/mL和646.53 U/mL，而培养温度为32 ℃和28 ℃时纤维素酶活性较低。可见最适的培养温度在35～37 ℃。F1-1菌株产酶条件优化后纤维素酶活性达到了646.53 U/mL。

3 小结与讨论

本研究从麻类来源的不同样品中进行产纤维素酶菌株的筛选，获得产纤维素酶活力较高的F1-1菌株，该菌株初始纤维素酶活性为103.20 U/mL。通过对F1-1菌株的固体培养基、半固体培养基、培养条件等进行优化，使其纤维素酶活性最终达到646.53 U/mL；确定其最佳产酶培养基为醋酸纤维素1.0%、纤维二糖0.8%、木糖0.5%、葡萄糖0.2%、麦麸1.2%、玉米粉0.6%、KNO3 0.4%、MgSO4 0.2%、CaCl2 0.05%、NaH2PO4 0.05%和Na2HPO4 0.05%；最佳培养条件是35～37 ℃、170 r/min振荡培养72 h。

固体培养基优化过程中发现葡萄糖添加量升高不利于F1-1菌株的纤维素酶活性提高，而纤维二糖和木糖添加量的适当提高有助于提高该菌株产纤维素酶活性。培养条件优化过程中发现摇床转速为100 r/min时酶活性较低，这可能跟半固体培养基的分散状态有关，转速低时培养基内非溶解性的固体颗粒物质沉在底部，不利于发酵。

麻类纤维是人类最早利用的纺织纤维之一，从快速腐烂的麻类作物中有利于筛选到产纤维素酶的菌种。相对于其他纤维作物，也可以筛选到一些具有种属特异性的新型菌株，为下一步纤维燃料乙醇技术的研发提供新的菌种资源。

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