厌氧产乙酸菌株ZY—3的筛选、鉴定及产酸条件

计划（编号：14222901D、14273801D）；河北省财政预算（编号：15302）；河北省青年基金（编号：C2015302018）。

作者简介：习彦花（1986—），女，河北石家庄人，硕士，助理研究员，主要从事能源微生物及生物质资源综合利用技术研究。Tel：（0311）83014879；E-mail：xiyanhua86@163.com。

通信作者：程辉彩，博士，副研究员，主要从事生物质能源方面的研究。E-mail：huicaicheng@163.com。

高浓度有机废水的厌氧生物处理技术因具有有效、简单、费用低廉等特点而被全世界广泛应用[1]。然而在厌氧工艺中仍有诸多不足之处，例如由于厌氧细菌增殖较慢而导致的厌氧反应器初次启动过程缓慢、出水挥发性脂肪酸（volatile fatty acid，簡称VFA）含量较高、大量丙酸积累导致系统发生酸化等[2-5]。马超等认为，产氢产乙酸菌群的产乙酸作用是厌氧消化过程的第一限速步骤，乙酸途径生成的甲烷约占甲烷生成总量的2/3[6-8]，因此筛选能利用丙酸盐发酵产乙酸的高效菌株，强化产乙酸菌群的产乙酸作用，是防止丙酸积累、提高厌氧消化系统负荷率、提高处理效率和运行稳定性的关键。近年来，国内外学者对各类发酵产酸菌群的生理生态学研究，尤其对作为第一限速步骤的产乙酸菌的研究越来越多[9-10]。

本研究通过选择性培养基从污水处理污泥中分离筛选到1株高效厌氧产乙酸菌，对它进行菌种鉴定以及发酵产酸特性研究，旨在为废水厌氧处理的生物强化作用提供菌种资源。通过将其人工接种到厌氧生物处理系统中，以提高厌氧反应器中生物持有量，加快产酸发酵菌群的产物——VFAs和乙醇等转化为乙酸的速率，解除大量因丙酸积累造成系统酸化问题，并为产甲烷菌群提供更加丰富的底物——乙酸，增强代谢活性，提高厌氧生物处理效能。

1材料与方法

1.1样品

从石家庄桥东污水处理厂采集3份活性污泥样品、5份水样。

1.2培养基

选择性培养基：胰蛋白胨0.25 g/L，酵母提取物 0.5 g/L，蛋白胨0.25 g/L，L-半胱氨酸盐酸盐0.5 g/L，NaCl 1.5 g/L，KH2PO4 1.0 g/L，MgSO4 0.5 g/L，0.1%刃天青指示剂2滴，pH值7.0～7.2。

无机盐培养基：L-半胱氨酸盐酸盐0.5 g/L，NaCl 15 g/L，KH2PO4 1.0 g/L，MgSO4 0.5 g/L，0.1%刃天青指示剂2滴，pH值7.0～7.2。

1.3菌株筛选方法

取1 g泥样（或1 mL水样）加入10 mL无氧灭菌的培养基中富集培养，传代稳定后采用改良Hungate滚管技术进行纯菌滚管分离。

1.4菌种鉴定

通过形态学观察、生理生化试验[11-12]和16S rDNA序列比对进行菌种鉴定。

1.5产酸特性

1.5.1培养温度对菌株产酸的影响

分别测定在4、16、25、30、37、45 ℃条件下，培养12 h菌株的生长状况及产酸情况。

1.5.2初始pH值对菌株ZY-3产酸的影响

在最适生长温度条件下，分别测定菌株在初始pH值为5.5、6.0、6.5、70、7.5、8.0、8.5、9.0培养条件下的生长及产酸情况。

1.5.3不同碳源对菌株产酸的影响

在最适生长温度及初始pH值条件下，分别测定菌株在以葡萄糖、麦芽糖、蔗糖、乳糖、淀粉、柠檬酸、甘露醇、甘油、丙酸钠、丁酸钠为碳源的培养条件下的生长及产酸情况。

1.5.4耐盐性研究

在培养基中分别添加0（CK）、0.2、04、0.8、1.2 mol/L的NaCl，测定菌株的生长状况及产酸情况，并分析菌株的耐盐程度。以上试验均重复3次，取平均值。

1.6分析方法

1.6.1菌体浓度测定

用751紫外分光光度计，在510 nm处测定供试样品的吸光度，作为菌体浓度。

1.6.2液相末端产物分析

乙酸含量的测定方法参考文献[13]。

2结果与分析

2.1菌株的分离鉴定

2.1.1菌株的筛选

从污水处理厂活性污泥及水样中分离得到乙酸产量较高的14株菌株。经厌氧发酵复筛，获得1株高效厌氧水解产乙酸菌株ZY-3，乙酸平均产量为 1 110.6 mg/L。

2.1.2菌株的形态特征

菌株ZY-3在选择性培养基上的菌落呈现白色或乳白色，不规则圆形，不透明。经光学显微镜观察，菌体呈杆状[（0.5～0.6） μm×（1.0～3.0） μm]，单个或短链，偶见长链；孢子卵圆形，中到次端生（图1）。该菌株在液体培养基中培养形成黏的沉淀。

[FK（W20][TPXYH1.tif；S+3mm]

2.2菌株ZY-3生理生化特征

由表1可见，菌株ZY-3为严格厌氧菌，革兰氏染色、明胶液化、甲基红试验、吲哚试验、葡萄糖发酵产H2试验均为阳性；淀粉水解、硝酸盐还原试验为阴性；可利用多种糖如纤维二糖、D-葡萄糖、果糖、麦芽糖等产酸，以丙酸盐、丁酸盐等为发酵底物。

2.3菌株ZY-3的16S rDNA序列测定与分析

菌株ZY-3经PCR扩增、16S rDNA序列分析表明，其16S rDNA长度为1 376 bp。将序列输入GenBank，以16S rDNA同源性为基础所构建的包括亲缘关系最近的菌株比对分析表明，菌株ZY-3属于梭状芽孢杆菌属的双酶梭状芽孢杆菌（Clostridium bifermentans）（图2）。

2.4菌株ZY-3的生长状况及产酸特性

2.4.1培养温度对菌株ZY-3生长与产乙酸的影响

由图3可见，菌株ZY-3最适培养温度为30～37 ℃。随着温度升高，菌体浓度也相应增加，37 ℃时，菌体浓度达到最大值；30 ℃ 培养温度下，乙酸产量最大，为1 364.3 mg/L；温度高于 37 ℃ 后菌体浓度及乙酸產量快速下降，45 ℃时基本无生长。在12 h培养过程中，乙酸产量同菌体浓度变化趋势基本一致。

2.4.2不同初始pH值对菌株ZY-3生长和产酸的影响

pH值对微生物的生理代谢影响很大。由图4可见，当pH值为7.5时，菌株ZY-3的菌体浓度最大，与pH值为7.0时无明显差异；菌株ZY-3在pH值7.5时有最大乙酸产量，为 1 256.1 mg/L，明显高于pH值为7.0时的乙酸产量；此后随着pH值的增加，乙酸产量降低，pH值为9.0时，菌体被抑制生长。由此可见，起始pH值在7.5左右时，菌株ZY-3具有较好的生长状态和产乙酸代谢的生理生化过程。

2.4.3不同碳源对菌株ZY-3生长及产酸的影响

无机盐培养基中按3%质量分数分别添加葡萄糖、麦芽糖、蔗糖、乳糖[CM（25]、淀粉、柠檬酸、甘露醇、甘油、丙酸钠、丁酸钠10种碳源进行发酵试验。由图5可见，当碳源为麦芽糖时，菌株ZY-3的菌体浓度最大，乙酸产量最高，为1 346.7 mg/L；其次为葡萄糖，乙酸产量为1 204.9 mg/L；柠檬酸、甘露醇、甘油等底物不利于菌株ZY-3的代谢产酸。另外菌株ZY-3能以丙酸钠、丁酸钠为唯一碳源发酵产乙酸，对解除厌氧消化过程中由于丙酸积累所导致的系统酸化问题具有积极意义。

2.4.4耐盐性研究

由图6可见，加入一定量的Na+虽然菌体浓度有一定的降低，但是却刺激了代谢产物乙酸的产生；随着Na+浓度的增加，菌体浓度有所下降，在0.8 mol/L时已经几乎被抑制；乙酸产量却在Na+浓度为0.4 mol/L时达到最大值1 588.7 mg/L，比对照提高20.8%。说明适当浓度的Na+可以刺激代谢产物乙酸的产生。

3讨论

与好氧技术相比，高浓度有机废水的厌氧生物处理效率更高、运行成本更低、剩余污泥少，且能生成甲烷。近年来，国内[CM（25]外针对有机废水厌氧消化水解产酸阶段的研究越来越多。[CM）]

[TPXYH6.tif]

强化产乙酸菌群的产乙酸作用，解除大量丙酸的积累，成为目前废水厌氧处理技术的研究热点之一。本研究从污水处理厂活性污泥中分离得到的菌株ZY-3（双酶梭菌，Clostridium bifermentans），具有较高的耐盐能力，能分解麦芽糖、蔗糖、淀粉等多种底物产乙酸。同时还能利用丙酸盐、丁酸盐等产乙酸，对解除有机废水厌氧消化过程中大量丙酸积累所造成的系统酸化有一定的积极意义。菌株ZY-3的发现拓宽了厌氧发酵产乙酸菌的范围，为有机废水厌氧消化处理的生物强化手段提供了宝贵的菌种资源，为进一步研制微生物强化菌剂提供了物质基础，具有较高的潜在应用价值。

参考文献：

[1]吕建国. 废水厌氧生物处理技术的发展与最新现状[J]. 环境科学与管理，2012，37（增刊1）：87-92.

[2]Ryan P，Forbes C，Mchugh S，et al. Eichment of acetogenic bacteria in high rate anaerbic reactors under mesophilic and thermophilic conditions[J]. Water Research，2010，44（14）：4261-4269.

[3]胡纪萃. 废水厌氧生物处理理论与技术[M]. 北京：中国建筑工业出版社，2003.

[4]Liu M，Ren N Q，Chen Y，et al. Conversion regular pattern of acetic acid，p rop ionic acid and butyric acid in UASB reactor[J]. Journal of Environmental Sciences，2004，16（3）：387-391.

[5]何娟，杨红薇，张建强，等. K+对肝素钠废水厌氧生物处理中污泥性能的影响[J]. 化工环保，2013，33（3）：244-248.

[6]马超. 产氢产乙酸优势菌群的选育及其生理生态特性研究[D]. 哈尔滨：哈尔滨工业大学，2008.

[7]吴美容，张瑞，周俊，等. 温度对产甲烷菌代谢途径和优势菌群结构的影响[J]. 化工学报，2014，65（5）：1602-1606.

[8]Zhang D D，Zhu W B，Tang C，et al. Bioreactor performance and methanogenic population dynamics in a low-temperature（5-18 ℃）anaerobic fixed-bed reactor[J]. Bioresource Technology，2012，104：136-143.

[9]王晋. 厌氧发酵产酸微生物种群生态及互营关系研究[D]. 无锡：江南大学，2013.

[10]许科伟. 污泥厌氧消化过程中乙酸累积的微生态机理研究[D]. 无锡：江南大学，2010.

[11]东秀珠，蔡妙英. 常见细菌系统鉴定手册[M]. 2版. 北京：科学出版社，2001.

[12]任南琪，王爱杰，马放. 产酸发酵微生物生理生态学[M]. 北京：科学出版社，2005.

[13]习彦花，程辉彩，张丽萍，等. 产氢产乙酸菌ZR-1的分离鉴定及产酸特性[J]. 微生物学通报，2011，38（2）：181-186.